Организация микробиологического мониторинга в неонатальных отделениях перинатального Центра Врач-эпидемиолог ГУ «РНПЦ «Мать и дитя» Лубовская Т. М.
По данным Всемирного альянса за безопасность пациентов (учрежден в октябре 2004 г. по распоряжению генерального директора ВОЗ Dr. Lee Jong-Wook): • Частота госпитальных инфекций - 8 -12% от числа госпитализированных пациентов (развитые страны): • Германия - 4% • Франция - 6 -10% • Испания - 8% • Англия - 9% • Частота госпитальных инфекций в реанимационных отделениях - 15 -40% (развитые страны). • Частота госпитальных инфекций в развивающихся странах - в от 2 до 20 раз больше. www. who. int/patientsafety
Система борьбы с госпитальными инфекциями базируется На внешнем контроле за соблюдением противоэпидемического режима (эпидемиологический надзор) Внешний контроль осуществляют эпидемиологи территориальных ЦГЭ На внутренней системе (инфекционный контроль) эпидемиологического наблюдения за госпитальными инфекциями в каждом конкретном учреждении Систему эпидемиологического контроля внутри учреждения организует госпитальный эпидемиолог
Что такое инфекционный контроль? ? ? Инфекционный контроль система организационных, профилактических и противоэпидемических мероприятий, направленных на предупреждение возникновения и распространения внутрибольничных инфекций, базирующаяся на результатах эпидемиологической диагностики
Стандарты инфекционного контроля: I. Структура управления системой ИК II. Учет и регистрация госпитальных инфекций III. Микробиологическое обеспечение ИК IV. Эпидемиологическая диагностика ГИ V. Профилактические и противоэпидемические мероприятия в системе ИК VI. Обучение персонала VII. Охрана здоровья персонала
И зачем нам нужен этот микробиологический мониторинг? ? Цель микробиологического мониторинга Выработка рациональной стратегии и тактики применения антимикробных препаратов на основе постоянного динамического слежения за чувствительностью микроорганизмов. Сдерживание формирования устойчивости микроорганизмов к противомикробным препаратам.
Этапы микробиологического мониторинга 1. Разработка перечня показаний для микробиологического обследования; 2. Стандартизацию техники забора образцов материала и транспортировки их в микробиологическую лабораторию; 3. Проведение дополнительного обучения сотрудников методикам забора, хранения, транспортировки проб для бактериологических исследований; 4. Стандартизацию тестирования микроорганизмов на чувствительность к антибиотикам; 5. Внедрение в работу микробиологической лаборатории методики определения чувствительности микрофлоры к антисептикам и дезинфектантам; 6. Внедрение компьютерной аналитической программы WHONET;
Правила забора и доставки клинического материала для микробиологического исследования Общие правила 1. Взятие материала предпочтительнее проводить до начала антибактериальной терапии на фоне антибактериальной терапии материал забирают перед очередным приемом (введением) антимикробных препаратов, то есть в момент, когда их концентрация в организме минимальна. 2. При взятии проб следует строго соблюдать правила асептики, во избежание ее случайной посторонней контаминации. 3. Для взятия проб следует использовать стерильные инструменты. 4. Количество материала должно быть достаточным для проведения исследования 5. Доставка в лабораторию материала для исследования должна осуществляться в специальных контейнерах, биксах или сумках-холодильниках 6. Транспортировка материала должна осуществляться в максимально короткие сроки: как правило, не более 1. 5 -2 часов после их получения. При использовании Транспортных сред – срок хранения увеличивается до 24 часов. 7. Все образцы должны иметь четкую маркировку, обеспечивающую их безошибочную идентификацию. К каждому образцу прикладывается направление.
Правила биологической безопасности При взятии биологического материала медицинский персонал должен использовать индивидуальные средства защиты: медицинский халат, шапочку, стерильные перчатки, а при необходимости – маски (респираторы), очки, непромокаемые фартуки.
Правила биологической безопасности Медицинский персонал с травмами (ранами) на руках, эксудативными поражениями кожи, мокнущими дерматитами отстраняются на время заболевания от медицинского обслуживания больных, контакта с предметами ухода за ними. Мелкие повреждения кожи (ссадины, царапины, уколы и т. д. ) должны быть закрыты лейкопластырем, напальчником. Медицинский персонал должен соблюдать меры предосторожности при заборе биологического материала с использованием режущих и колющих инструментов (иглы, ножницы, скальпели и т. д. ) Во избежание ранений не допускается при заборе биологического материла использование стеклянных предметов с отбитыми краями Забор биологического материала должен проводиться только с использованием стерильных перчаток. При ранениях, контактах с кровью, другими биологическими материалами действия медицинского персонала осуществляются на основании приказа Министерства здравоохранения Республики Беларусь от 16. 12. 1998 г. № 351 «о пересмотре ведомственных нормативных актов, регламентирующих вопросы по проблеме ВИЧ/СПИД.
Как избежать постороннюю контаминацию биологического материала при его заборе? ? ? Соблюдение адекватной политики обработки рук
Зачем нам нужно мыть руки? Спустя 24 часа после взятия отпечатка руки
Техника обработки рук • ногти на руках должны быть коротко подстрижены • запрещено во время работы ношение искусственных ногтей, колец, браслетов и других украшений, затрудняющих эффективное удаление микроорганизмов
Уровни деконтаминации рук: Обычное мытье рук с мылом Гигиеническая антисептика Хирургическая антисептика
Мытье рук с мылом Цель: удаление грязи и транзиторной флоры, контаминирующей кожу рук медицинского персонала в результате контакта с инфицированными или колонизированными пациентами и/или контаминированными объектами окружающей среды. • Перед и после физического контакта с Когда? ? пациентом • Перед приготовлением и раздачей пищи, перед едой • После выполнения определенных функций собственного организма (посещение туалета, сморкание и т. п. ) • Во всех случаях, когда руки явно загрязнены
Этапы мытья рук: 6 3 2 1 4 7 5 8 9
Доля неудовлетворительных проб на стерильность, взятых после предоперационной обработки рук у хирургов
Техника обработки рук при гигиенической антисептике (Европейский стандарт EN-1500) очень загрязненные менее загрязненные 1 2 3 4 тыльная ладонная 5 6
Забор биологического материла осуществляется только стерильным инструментом в стерильные пробирки
Транспортировка биологического материала Контейнер, подвергающийся дезинфекции 4 -ех слойный материал Направления отдельно в полиэтиленовом пакете
Как нельзя делать
«Микробиологическое исследование биологического материала» форма № 218/у-07, утвержденная приказом Министерства Здравоохранения Республики Беларусь от 28. 09. 2007 г. № 787. Микробиологическое исследование биологического материала (указать) _______ «___» __________ 20___ г. Отделение _____________ 1. Фамилия, имя, отчество пациента (больного)______________________ 2. Число, месяц, год рождения _____________________________ 3. Пол: мужской, женский (нужное подчеркнуть) 4. Адрес места жительства: область _____ район _______ город (пгт) _________ село (деревня) ____________ проспект/улица/переулок/проезд _______ дом ______, корпус _______, квартира _______ (нужное подчеркнуть) 5. Диагноз _____________________________________ 6. Время (часы, минуты) взятия материала _______________________ 7. Выделенные микроорганизмы ____________________________ 8. Результаты определения чувствительности микроорганизмов к антибиотикам: Антибактериальные препараты(указать нужные) Чувствительный Умеренно устойчивый Устойчивый Клинико-лабораторное заключение: __________________________ Врач лабораторной диагностики __________ (подпись)_________________(инициалы, фамилия)Фельдшер-лаборант _____________ (подпись)_________________(инициалы, фамилия)Дата выдачи результатов исследования «______» ________ 20_____ г.
Правила забора и доставки клинического материала для микробиологического исследования Кровь Пальпировать вену следует перед обработкой места венепункции. для предотвращения контаминации кожу пациента над пунктируемой веной тщательно обработать в следующей последовательности: ¸ очистить 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком) ¸ протереть тампоном, смоченным 5% настойкой йода (или йодопирона, йодоната, хлоргексидина) круговыми движениями в направлении от центра будущего прокола к периферии ¸ дают высохнуть обработанному участку кожи ¸ не пальпируя повторно вену произвести взятие крови ¸ после венепункции удалить остатки йода 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком) ¸ при аллергической реакции на йод кожу дважды обрабатывают 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком)
Правила забора и доставки клинического материала для микробиологического исследования Использование сред, приготовленных в лаборатории: Среды в стеклянных флаконах, закрытые стерильными ватномарлевыми пробками и предохранительными стерильными бумажными колпачками: · «двухфазная среда» (комбинация плотной и жидкой среды в одном флаконе) – для роста аэробных микроорганизмов · полужидкие специальные среды - для роста анаэробных микроорганизмов Посев осуществляют во флаконы со средами над пламенем спиртовой горелки. Взятие и посев крови осуществляют два человека – в то время как один обрабатывает кожу пациента, пунктирует вену и берёт кровь, другой - над пламенем спиртовки открывает пробки флаконов, подставляет флаконы со средой под струю крови из шприца или системы, обжигает горлышки и пробки флаконов и закрывает их. Рекомендуемое соотношение объёмов крови и среды 1: 10 (не менее 1020 мл у взрослых, 1 -20 мл у детей в зависимости от веса пациента). Доставка в лабораторию в максимально короткие сроки. Хранить в холодильнике не более 1 -2 часов (возможен лизис бактерий)
Правила забора и доставки клинического материала для микробиологического исследования Использование коммерческих сред (Bac. T/ALERT, Bio. Merieux): • для аэробных микроорганизмов (с зелёной крышкой) • для анаэробных микроорганизмов (с красной крышкой) • педиатрические флаконы – (с жёлтой крышкой) для исследования крови в объёме до 5 мл Снять предохранительную пластиковую крышку. Продезинфицировать резиновую пробку флакона 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком) и выдержать 1 минуту. Дать просохнуть обработанной поверхности. Проколоть пробку флакона иглой шприца и произвести посев крови. Объём исследуемой крови по прилагаемой инструкции - обычно 10 -30 мл для взрослых и 1 - 5 мл для детей до 12 л (метка на этикетке флакона позволяет оценить объём взятой крови). Сначала произвести посев в «анаэробный» флакон, затем – в «аэробный» во избежание попадания воздуха из шприца. Перемешать осторожно круговыми движениями содержимое флакона. Промаркировать флаконы До транспортировки в лабораторию содержат в термостате или при комнатной температуре в защищённом от света месте (не в холодильнике!!)
Правила забора и доставки клинического материала для микробиологического исследования При отсутствии в отделении флаконов для гемокультур. В исключительных случаях, при экстренной ситуации допускается использование 20 -миллилитрового шприца с иглами: • В шприц предварительно набирают 0, 5 -0, 7 мл стерильного гепарина. • Заменить иглу. • Пунктировать вену, соблюдая правила асептики. • Набрать 10 -15 - мл крови. • Перемешать осторожным покачиванием с гепарином (иглу со шприца не снимать). • В этом же шприце с согнутой у основания иглой (или надетым стерильным колпачком) немедленно отправить в лабораторию.
Правила забора и доставки клинического материала для микробиологического исследования Исследование сосудистого катетера. Исследуют при подозрении на инфекцию катетерного происхождения. • Очистить кожу вокруг катетера 70% этиловым спиртом (или заменяющим его антисептиком) • В асептических условиях извлечь катетер и отрезать его дистальный (внутрисосудистый) конец около 5 см длиной. • Поместить в стерильный контейнер (пробирку). Доставить в лабораторию немедленно! Не допускать высыхания образца!
Правила забора и доставки клинического материала для микробиологического исследования Исследование ликвора Спинномозговую жидкость получают при люмбальной пункции или пункции боковых желудочков мозга в объеме 3 -5 мл, помещают в стерильную, желательно центрифужную пробирку и немедленно доставляют в лабораторию. Полученную пробу доставить в лабораторию, избегая чрезмерного перегрева и особенно охлаждения (может быть использован термос). Охлаждение ликвора ниже 30 градусов ведёт к гибели менингококков. При невозможности немедленно доставить в лабораторию ликвор сохраняют при 37 градусах в термостате. При использовании коммерческих сред (Bac. T/ALERT FA и др. ) свежевзятый ликвор в количестве 5 -10 мл из шприца, проколов резиновую пробку, вносится во флакон со средой (см. исследование крови).
Правила забора и доставки клинического материала для микробиологического исследования Моча Исследуют утреннюю среднюю порцию (10 -20 мл) свободно выпущенной мочи (за ночь концентрация бактерий в мочевом пузыре возрастает). Не следует принуждать пациента к приему жидкости для форсирования диуреза, так как происходит разбавление мочи и снижение числа бактерий. Для сбора мочи используют стерильные ёмкости, которые закрываются резиновой стерильной пробкой. Нельзя собирать мочу из мочеприемника или судна! Перед взятием мочи проводят тщательный туалет наружных половых органов с мылом и кипяченой водой во избежание излишней ее контаминации при мочеиспускании нормальной микрофлорой промежности. Доставка мочи в лабораторию должна осуществляться в максимально короткие сроки. Посев следует проводить не позднее 2 ч после взятия материала либо в течение 8 ч при условии ее хранения в холодильнике. Недопустимо бактериологическое исследование мочи, собранной в течение суток!
Правила забора и доставки клинического материала для микробиологического исследования Отделяемое из носа, зева Отделяемое из носа, берут стерильными ватными тампонами, которые вводят в глубь полости носа. Материал из зева – увлажненными стерильными ватными тампонами. Тампоны помещают в стерильные пробирки. Хранить в холодильнике не более 2 часов!
Правила забора и доставки клинического материала для микробиологического исследования Отделяемое ран и выпотов Материал берут из глубины поражённого участка, на границе со здоровыми тканями и помещают в стерильную пробирку или консервируют погружением тампона в транспортную среду Доставить в лабораторию в течение 1 часа. При невозможности доставить материал в течение этого времени, он должен храниться в холодильнике, но не более 2 часов. В транспортной среде материал может хранится до 24 часов.
Правила забора и доставки клинического материала для микробиологического исследования Отделяемое глаз Отделяемое с конъюнктивы. Берут стеклянными стерильными палочками или платиновой петлей, предварительно фламбированной в пламени спиртовки и остуженной и погружают в 0, 2 % сахарный бульон. При наличии достаточно обильного гнойного отделяемого используют стерильные ватные тампоны (желательно коммерческие), которыми берут гной с внутренней поверхности нижнего века движением к внутреннему углу глазной щели. Необходимо следить, чтобы при моргании ресницы не касались тампона (придерживать веки руками). Край век. Корочки гноя удаляют пинцетом. Берут материал из язвочки у основания ресниц.
Правила забора и доставки клинического материала для микробиологического исследования Наружное ухо Материал забирают стерильным ватным тампонам и помещают в стерильную пробирку. Материал должен быть доставлен в лабораторию в течение 1 часа. Хранить в холодильнике не более 2 часов!
Правила забора и доставки клинического материала для микробиологического исследования Испражнения Материал забирают стерильным Ватным тампонам и помещают в стерильную пробирку. Материал должен быть доставлен в лабораторию в течение 1 часа. Хранить в холодильнике не более 2 часов!
Анализ полученных результатов Создание базы данных - Программа WHONET (ВОЗ сеть) Программа, рекомендованная ВОЗ для наблюдения за антибиотикорезистентностью микроорганизмов
Анализ полученных результатов Сводная таблица изолятов "Частота выделений микроорганизмов с учетом распределения по месяцам"
Анализ полученных результатов Таблица и гистограмма распределения R, I и S штаммов микроорганизмов
Важно помнить! Погрешности в правилах сбора материала для микробиологического исследования приводят к ошибкам в диагностике возбудителя и определении его антибиотикочувствительности, что влечет за собой неправильный подбор препаратов для антибиотикопрофилактики и антибиотикотерапии, формированию устойчивости микроорганизмов к противомикробным препаратам (госпитальные штаммы).
СПАСИБО ЗА ВНИМАНИЕ!
Скачать презентацию Организация микробиологического мониторинга в неонатальных отделениях перинатального Центра
aa8af1b92d6d572db905e0f97d5448c3.ppt