Мониторинг объектов окружающей среды, напряженности иммунитета и циркуляции вирусов
Серологический мониторинг напряженности иммунитета
С целью оценки эффективности и качества проводимой иммунопрофилактики дифтерии, столбняка, коклюша, полиомиелита, кори, эпидемического паротита, краснухи, вирусного гепатита В, клещевого энцефалита, а также слежения за иммунологической структурой населения к менингококку, вирусам лихорадки Западного Нила и геморрагической лихорадки с почечным синдромом проводится забор крови для определения уровня напряженности иммунитета.
Серологический мониторинг состояния коллективного иммунитета населения осуществляется учреждениями государственной санитарно-эпидемиологической службы и лечебно-профилактическими учреждениями. Проведение серологического мониторинга состояния коллективного иммунитета оформляется совместным приказом лечебно-профилактического учреждения и центра государственного санитарноэпидемиологического надзора, в котором определяются территории, время (график), контингенты и численность групп населения, подлежащих обследованию, а также лица, ответственные за организацию и проведение этой работы.
Обследованию подлежат «индикаторные» группы населения: Привитые против дифтерии, столбняка, коклюша, кори, краснухи, эпидемического паротита, полиомиелита, вирусного гепатита В, клещевого энцефалита (в эндемичных районах) дети и подростки; привитые против дифтерии, столбняка, вирусного гепатита В, кори, краснухи, клещевого энцефалита взрослые. При этом срок, прошедший от последней прививки до обследования, должен составлять не менее 3 месяцев; Медицинские работники лечебных учреждений; В неэндемичных по клещевому энцефалиту и клещевому боррелиозу территориях (Калачинский и Таврический районах и г. Омске) серологическое исследование крови проводится для оценки фактической защищенности не привитого против клещевого энцефалита населения;
В "индикаторные" группы не включать: - переболевших коклюшем, дифтерией, столбняком, корью, краснухой, эпидемическим паротитом, полиомиелитом, клещевым энцефалитом и острым гепатитом B, а также больных хроническим гепатитом B и носителей вируса гепатита B;
В "индикаторные" группы не включать: - не привитых против этих инфекций (состояние иммунитета к кори, краснухе, эпидемическому паротиту без учета данных о прививках определяется у взрослых только в возрастной группе 40 лет и старше);
В "индикаторные" группы не включать: перенесших какое-либо заболевание за 1 - 1, 5 месяца до обследования, так как отдельные болезни могут привести к временному снижению титра специфических антител.
В "индикаторные" группы не включать: По результатам плановых серологических обследований все выявленные «серонегативные» к дифтерии, полиомиелиту, кори, краснухе, эпидемическому паротиту, в том числе ревакцинированные, подлежат прививке, которая регистрируется в соответствующей прививочной документации, равно как и результаты серологического исследования. При проведении серологических исследований на полиомиелит, лицам с отрицательными результатами серологического исследования уровня индивидуального иммунитета к полиомиелиту ко всем трем типам полиовируса или к одному из типов полиовируса – иммунизация проводится двукратно с интервалом в 1 месяц.
Методические указания: МУ 3. 1. 2943 -11 «Организация и проведение серологического мониторинга состояния коллективного иммунитета к инфекциям, управляемым средствами специфической профилактики (дифтерия, столбняк, коклюш, корь, краснуха, эпидемический паротит, полиомиелит, гепатит В), утверждены Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации 15. 07. 2011 г.
Методы: Применяемые при мониторинге методы исследования сывороток должны быть безвредными, специфичными, чувствительными, стандартными и доступными для массовых обследований. Такими в настоящее время в Российской Федерации являются: реакция пассивной гемагглютинации (РПГА) - для выявления антител к дифтерийному и столбнячному анатоксину; иммуноферментный анализ (ИФА) - для выявления антител к вирусам кори, краснухи и эпидемического паротита; реакция нейтрализации цитопатического действия вируса в культуре клеток ткани (макро- и микрометод) для выявления антител к вирусу полиомиелита.
Методы: Для исключения ошибки метода и выявления истинно серонегативных результатов повторно исследуют сыворотки крови, в которых не обнаружены специфические антитела к возбудителям дифтерии, столбняка, кори, краснухи, эпидемического паротита. О напряженности коллективного иммунитета к полиомиелиту и качестве вакцинопрофилактики можно судить на основании трех показателей.
Методы: Процент лиц с антителами к вирусу полиомиелита типов 1, 2 и 3. Серопозитивными считаются сыворотки, у которых титр антител равен или выше 1: 8. Процент таких сывороток рассчитывается отдельно для каждого серотипа вируса полиомиелита. Процент трижды серонегативных лиц. Серонегативными считаются сыворотки, в которых в разведении 1: 8 отсутствуют антитела ко всем трем типам вируса полиомиелита. Рассчитывается их процент во всей группе обследованных сывороток.
Методы: Средняя геометрическая величина титра антител, которая рассчитывается только для группы сывороток, имеющих антитела к соответствующему серотипу полиовируса в титре 1: 8 и выше. Титры антител переводят в логарифмы с основанием 2, суммируют и делят на число сывороток с антителами (см. прилож. 1). Результаты серологического обследования контингентов вносятся в рабочие журналы лабораторий, где регистрируется наименование населенного пункта, учреждения, фамилия, инициалы, возраст обследуемого и титр антител. Результаты также вносятся в учетные формы (историю развития ребенка, амбулаторную карту больного).
Методические подходы к отбору групп населения Единство места получения прививки (лечебнопрофилактические, детские образовательные учреждения, школы и т. д. , где проводили прививки). Единство прививочного анамнеза. Сходство эпидемиологической ситуации, в условиях которой формируются обследуемые группы. Серологический мониторинг целесообразно проводить на крупных территориях в субъектах Российской Федерации (городах, районных центрах) ежегодно (каждый год в обследование включаются разные районы и поликлиники города, районного центра), а на территории районов субъекта Российской Федерации по графику, один раз в 6 - 7 лет.
Методические подходы к отбору групп населения Для обследования следует выбрать 4 коллектива одной возрастной группы (по 2 коллектива от двух лечебнопрофилактических учреждений), не менее 25 человек в каждом коллективе, т. е. не менее 100 человек в каждой индикаторной группе. В детских коллективах перед серологическим обследованием медицинские работники должны провести разъяснительную работу с родителями о необходимости профилактики указанных инфекций и определения напряженности поствакцинального иммунитета к ним. Сыворотки крови взрослых для исследования можно брать на станциях переливания крови без учета прививочного анамнеза доноров.
Дифтерия и столбняк По результатам серологического обследования детей в возрасте 3 - 4 лет можно судить о формировании базисного иммунитета, в возрасте 16 - 17 лет - о качестве прививок, проводимых в школе и средних учебных заведениях; у взрослых - о фактическом уровне защищенности от дифтерии и столбняка.
Корь, паротит, краснуха По результатам серологического обследования детей в возрасте 3 - 4 лет и 9 - 10 лет судят об уровне и напряженности противокоревого, противопаротитного и противокраснушного иммунитета в ближайшие сроки после вакцинации и ревакцинации. Серологическое обследование детей в возрасте 16 - 17 лет позволяет оценить результативность ревакцинации в отдаленные сроки, а также уровень иммунной прослойки к этим инфекциям во вновь формирующихся коллективах средних и высших учебных заведений. Результаты обследования взрослых в возрасте 23 - 25 лет характеризуют состояние специфического иммунитета среди молодого взрослого населения, в т. ч. при краснухе - женщин детородного возраста.
Полиомиелит По результатам серологического обследования детей в возрасте 1 - 2, 3 - 4, 14 лет судят об уровне и напряженности иммунитета к полиомиелиту в ближайшие сроки после вакцинации и ревакцинации живой полиомиелитной вакциной, у взрослых - о фактическом состоянии иммунитета к полиомиелиту. По усмотрению эпидемиологов серологическое обследование при рассматриваемых инфекциях может быть проведено и в других возрастных группах.
Выявление в каждой обследуемой группе не более 10% лиц с титром дифтерийных и столбнячных антител менее 1: 20 и взрослых не более 20% лиц с отсутствием защитных титров дифтерийных и столбнячных антител служит показателем достаточной защищенности от дифтерии и столбняка. Критериями эпидемического благополучия при кори принято считать выявление в каждой индикаторной группе не более 7% серонегативных лиц.
Среди привитых против паротита доля серонегативных не должна превышать 15% - у однократно и 10% - у двукратно привитых, а доля серонегативных среди привитых против краснухи должна составлять не более 4%. Выявление в каждой обследуемой группе не более 20%, серонегативных к каждому из трех серотипов вируса полиомиелита, служит показателем достаточной защищенности от полиомиелита.
1. Выявить причины низкого уровня иммунитета: провести анализ прививочных документов на выявленных серонегативных лиц для установления факта наличия прививки - сопоставить сведения о прививках во всех учетных формах (карта профилактических прививок, история развития ребенка, амбулаторная карта больного, рабочие журналы и прочие); оценить условия хранения и транспортирования вакцин, порядок проведения иммунизации. 2. Дополнительно проверить состояние иммунитета к этим инфекциям у лиц того же возраста в количестве не менее 100 человек, но в двух других учреждениях (детских дошкольных, школах, домах ребенка и т. д. ) того же лечебно-профилактического учреждения, где выявлен высокий процент серонегативных лиц.
1. Выявить причины низкого уровня иммунитета: провести анализ прививочных документов на выявленных серонегативных лиц для установления факта наличия прививки - сопоставить сведения о прививках во всех учетных формах (карта профилактических прививок, история развития ребенка, амбулаторная карта больного, рабочие журналы и прочие); оценить условия хранения и транспортирования вакцин, порядок проведения иммунизации. 2. Дополнительно проверить состояние иммунитета к этим инфекциям у лиц того же возраста в количестве не менее 100 человек, но в двух других учреждениях (детских дошкольных, школах, домах ребенка и т. д. ) того же лечебно-профилактического учреждения, где выявлен высокий процент серонегативных лиц.
Если после дополнительного обследования количество незащищенных к дифтерии, столбняку, кори, краснухе, эпидемическому паротиту и полиомиелиту будет превышать приведенные критерии, следует решать вопрос о тактике иммунопрофилактики в данных коллективах. Для этого необходимо обследовать лиц других возрастных групп по усмотрению эпидемиолога. Если доля серонегативных к соответствующим возбудителям среди этих лиц не будет превышать вышеприведенные показатели, то дополнительным прививкам в обследуемых коллективах подлежат лица того возраста, где выявлен высокий процент серонегативных к вирусам кори, краснухи, эпидемического паротита, полиомиелита, и лица с титром дифтерийных и столбнячных антител
Если процент серонегативных среди обследованных окажется значительно выше приведенных критериев, то следует решать вопрос о дополнительных прививках всем лицам, медицинское обслуживание которых осуществляется данным лечебно-профилактическим учреждением. Если выявлены коллективы с высоким процентом серонегативных лиц, относящиеся к двум лечебнопрофилактическим учреждениям, то для оценки прививочной работы в данном районе необходимо провести серологическое обследование индикаторных групп в других учреждениях (детских дошкольных, школах и т. д. ) этого района. Вопрос расширения профилактических мероприятий в территории необходимо согласовать с Департаментом
Данные о низкой защищенности от дифтерии подтверждаются результатами исследования иммунитета к столбняку. Так, высокий процент привитых против дифтерии и столбняка в учетных документах в сочетании с высоким процентом лиц с титром антител менее 1: 20 не только к дифтерии, но и к столбняку свидетельствуют о недостоверности записей о прививках.
Высокий процент лиц, защищенных от дифтерии, в сочетании с низким уровнем иммунитета к столбняку не является результатом проведения профилактических прививок, а свидетельствует об их инфицировании возбудителем дифтерии (больные или носители). Отсутствие при этом регистрируемой заболеваемости дифтерией может быть обусловлено плохой работой по выявлению больных, особенно легкими формами заболевания (недостаточный объем бактериологических обследований больных с диагнозом ангина, нарушение правил взятия и доставки материала для бактериологического исследования; некачественная работа бактериологической лаборатории - отсутствие высеваемости даже нетоксигенных коринебактерий дифтерии и др. ).
Если при обследовании взрослых в одной из возрастных групп число серонегативных к дифтерии превышает 20%, необходимо увеличить число обследованных в той же возрастной группе. Если число серонегативных вновь превышает 20%, необходимо провести анализ прививочной работы с целью выявления непривитых и провести их иммунизацию. Материалы серологического мониторинга состояния коллективного иммунитета обобщаются по учреждениям разного типа, поликлиникам, району и субъекту Российской Федерации в целом (табл. 2). Далее по каждой инфекции результаты серологического обследования сопоставляют с показателями заболеваемости и уровнем охвата прививками, что позволяет подтвердить официальные данные об иммунизации населения или выявить различия в охвате прививками и уровнем заболеваемости.
Динамическое слежение за состоянием иммунитета населения к управляемым инфекциям позволяет своевременно установить признаки эпидемического неблагополучия. Прогноз эпидемиологической ситуации по каждой из наблюдаемых инфекций считается неудовлетворительным, если выявляется тенденция к увеличению доли серонегативных. При выявлении на какой-либо территории первых прогностических признаков, свидетельствующих о приближении ухудшения эпидемиологической ситуации по любой из рассматриваемых инфекций, принимаются управленческие решения, направленные на увеличение уровня иммунной прослойки среди населения.
Грипп птиц
Методические указания МУК 4. 2. 2136 -06 “Организация и проведение лабораторной диагностики заболеваний, вызванных высоковирулентными штаммами вируса гриппа птиц типа А (ВГПА), у людей” (утв. Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом РФ 9 ноября 2006 г. ) Методические рекомендации по лабораторному мониторингу гриппа птиц на территории Российской Федерации
Мониторинговые исследования домашней птицы 3. 1. Исследованию подлежит птица промышленных стад и племенных птицехозяйств, частного сектора (с индивидуальных подворий), птица, содержащаяся в птицепитомниках, зоосадах, синантропная птица, обитающая на территории птицехозяйств, птица, ввозимая на территорию Российской Федерации, а также при купле-продаже внутри страны, ввозимое на территорию Российской Федерации инкубационное яйцо. 3. 7. При подозрении на грипп птиц (наличие клинических, патологоанатомических признаков заболевания, внезапном падеже) в стадах домашней птицы рекомендуется проводить отбор проб для проведения ПЦР-диагностики и вирусологических исследований. Для исследований отбираются клоакальные и/или трахеальные смывы, помет, патматериал (головной мозг, легкие, трахея, селезенка, участки кишечника).
Мониторинговые исследования дикой птицы 4. 1. Мониторинг дикой птицы необходимо проводить сезонно: весна, лето, осень (т. е. весенняя миграция, гнездование после вылупления птенцов, осенняя миграция) с привлечением зоологов и специалистов охотоуправлений в субъектах Российской Федерации.
Мониторинговые исследования дикой птицы 4. 2. Во время сезонных совместных экспедиций ветеринарных специалистов, зоологов и специалистов охотоуправлений в субъектах Российской Федерации пробы рекомендуется отбирать в местах массового гнездования птиц, зимовок, а также на пути основных миграционных маршрутов. Видовой состав птицы, подлежащей мониторингу, определяется в соответствии с особенностями каждого региона с привлечением специалистов охотоуправлений или зоологов. Исследованиям подвергаются синантропные (воробьи, голуби, грачи, вороны), полусинантропные (чайки), а также дикие мигрирующие виды водоплавающих и околоводных птиц (утки, гуси, массовые виды куликов, колониально гнездящиеся цапли и др. ).
Мониторинговые исследования дикой птицы 4. 2. От отловленных птиц рекомендуется отбирать пробы сывороток крови, клоакальные и/или трахеальные смывы. Отловленные нетравмированные птицы, если применялся метод живоотлова, в случае отрицательного результата отпускаются. В случае положительного результата птицы умерщвляются бескровным методом и отправляются в лабораторию для дальнейших исследований. При проведении отстрела птиц или в случае их умерщвления в диагностических целях берутся клоакальные, трахеальные смывы и пробы патматериала. Помет от дикой птицы, а также клоакальные, трахеальные смывы и патматериал исследуются методом ПЦР.
Мониторинговые исследования дикой птицы 4. 4. При выявлении в дикой природе случаев внезапного падежа птиц или в случае обнаружения при клиническом обследовании птицы на водоемах характерных клинических признаков болезни проводится отбор патматериала на вирусовыделение и для ПЦРдиагностики. 4. 5. Положительные пробы из межобластных ветеринарных лабораторий и ветлабораторий субъектов Российской Федерации направляются для дальнейших исследований на грипп - в ФГУ ЦНМВЛ и Национальную референтную лабораторию по гриппу птиц в ФГУ "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГУ ВНИИЗЖ).
Рекомендуемая периодичность отбора проб 5. 1. Домашняя птица обследуется: в благополучных регионах - 2 раза в год; в неблагополучных регионах и в угрожаемой зоне - один раз в месяц (каждый птичник, каждый населенный пункт); ввозимая из-за рубежа птица, эмбрионы, инкубационное яйцо - при ввозе, в период карантинирования. 5. 2. Дикая птица обследуется: в благополучных регионах 3 раза в год (весна, лето, осень); в неблагополучных районах - 1 раз в квартал.
Рекомендуемые методы исследований Иммуноферментый анализ Реакция торможения гемагглютинации Реакция диффузионной преципитации Полимеразно-цепная реакция
Порядок отбора и доставки проб 7. 1. Отбор проб сывороток крови и патологического материала от всех категорий птицы организуют совместно специалисты СББЖ и районных, межрайонных, зональных ветеринарных лабораторий или диагностических кабинетов. Отбор проб осуществляет ветеринарный специалист, имеющий специальную подготовку. 7. 2. Отбор проб сывороток крови. Отбор проб крови у птиц осуществляется в соответствии с планом мониторинга из подкрыльцовой вены, или при забое птицы взятие проб крови у больной или подозреваемой в заражении птицы проводят с соблюдением требований безопасности. Транспортировка проб сывороток крови в лабораторию осуществляется в стеклянных или пластиковых пробирках, закрытых крышками (пробками). Пробирки маркируются. В сопроводительном документе указывается: вид и возраст птицы, наименование предприятия и адрес (Ф. И. О. владельца, адрес), количество проб, дата отбора проб.
Порядок отбора и доставки проб 7. 3. Отбор проб патологического и биологического материалов. При подозрении на грипп птиц (наличие клинических, патологоанатомических признаков заболевания, внезапного падежа) осуществляют отбор проб патматериала: головной мозг, легкие, трахея, селезенка, участки кишечника, почки, сердце. От каждого стада птицы отбирают для исследований 5 - 10 трупов или патматериал от 5 - 10 трупов, клоакальные и/или трахеальные смывы от 10 - 15 голов (смывы от 5 голов можно объединять в одну пробу), 1 пробу помета от стада. Пробу помета отбирают: примерно по 1 грамму помета из 60 точек птичника (выгула или вольеры), выбранных по диагонали крест-накрест.
Порядок отбора и доставки проб Доставку трупов птиц и отобранных проб патматериала (органов, тканей) в лаборатории осуществляют в кратчайшие сроки во влагонепроницаемой таре, герметично упакованной. При доставке проб в течение 24 часов отобранные органы и ткани помещают в пластиковые контейнеры, герметичные целлофановые пакеты, упаковывают в широкогорлые термосы (небьющиеся) с сухим льдом или хладоэлементами. Если доставка образцов длится более 24 часов, они охлаждаются и доставляются на льду (можно использовать хладоэлементы). Хранение суспензий из органов возможно до 4 дней при 4 °С. Для увеличения сроков хранения образцы хранят при температуре -80 °С. Хранение при 20 °С может отрицательно сказаться на выделении вируса. Образцы фекалий рекомендуется хранить и осуществлять их доставку при 4 °С. Клоакальные и трахеальные смывы можно доставлять в сухом виде или в транспортных средах.
Порядок отбора и доставки проб 7. 5. Отбор проб от дикой птицы осуществляется в соответствии с п. 4 и п. п. 7. 2, 7. 3, 7. 4 с привлечением зоологов и специалистов охотоуправлений в субъектах Российской Федерации. При направлении на исследование проб сывороток крови, патматериалов или биоматериалов от дикой птицы необходимо указывать вид птицы, место отбора проб, количество проб, примерный возраст (взрослая, молодняк), дату отбора. 7. 6. Пробы сыворотки крови и патматериал направляют нарочным с сопроводительным письмом в ветлаборатории субъектов Российской Федерации или в межобластные ветеринарные лаборатории.
Порядок отбора и доставки проб 7. 7. Все положительные на грипп птиц пробы патматериалов, первичные изоляты, полученные при вирусологических исследованиях, в т. ч. изоляты низкопатогенных вирусов гриппа птиц, из межобластных ветеринарных лабораторий и ветлабораторий субъектов Российской Федерации направляются для дальнейших исследований на грипп в ФГУ ЦНМВЛ. Затем из ФГУ ЦНМВЛ в Национальную референтную лабораторию по гриппу птиц в ФГУ "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГУ ВНИИЗЖ).
Отбор проб от людей 3. 2. 1 Забор материала проводят в ЛПУ при подозрении на заболевание ВГПА. 3. 2. 2 Первичное исследование материала осуществляют на базе вирусологических лабораторий ФГУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии» в субъектах Российской Федерации или лабораторий учреждений противочумной системы Роспотребнадзора (в соответствии с перечнем приложение 3) с использованием ОТ-ПЦР или вирусологических исследований. 3. 2. 3 Обязательное подтверждающее тестирование в референс-лаборатории не проводится. Направление материала в референс-лабораторию осуществляется в случаях возникновения противоречивых результатов при первичном тестировании.
Отбор проб от людей 4. 1 Сбор клинического материала и его упаковку осуществляет медицинский работник лечебнопрофилактического учреждения, обученный требованиям и правилам биологической безопасности при работе и сборе материала, подозрительного на зараженность ВГПА. Забор производят в стерильные одноразовые флаконы, пробирки, контейнеры, стерильными инструментами. Все виды работ проводят с соблюдением противоэпидемического режима, согласно СП 1. 3. 1285 -03 «Безопасность работы с микроорганизмами I-II групп патогенности (опасности)» . 4. 2 Упаковка, условия хранения и транспортирования материала для проведения лабораторной диагностики ВГПА должны соответствовать требованиям СП 1. 2. 03695 «Порядок учета, хранения, передачи и транспортирования микроорганизмов I-IV групп патогенности» и настоящих методических указаний (приложение 3).
Отбор проб от людей 4. 3 Для исследования забирают клинического материала: следующие виды - смывы из полости носа и ротоглотки (для ОТ-ПЦРанализа); - мазки из полости носа (для МФА и ОТ-ПЦР-анализа) и ротоглотки (для ОТ-ПЦР-анализа); - носоглоточное отделяемое (для выделения вируса, ОТПЦР-анализа). - фекалии (для ОТ-ПЦР-анализа). 4. 4 Сбор материала производят в пробирки со стабилизирующей средой, приготовленной согласно приложению 4, и/или в пробирки с транспортной средой, предоставляемой (или рекомендуемой) фирмой-производителем тест-систем. 4. 5 Отправку материала в лабораторию осуществляют в транспортной таре со стабилизирующей средой (приложение 4).
Отбор проб от людей Упаковка и транспортирование образцов 5. 1 Все материалы, доставляемые в лабораторию, должны быть герметично «дважды упакованы» : 1) в транспортную емкость (плотно закрывающиеся пластмассовые пробирки или флаконы с завинчивающимися крышками); плотно закрытый верхний конец транспортной емкости вместе с крышкой герметизируют различными пластификаторами (парафин, парафильм и др. ); емкость маркируют; 2) в полиэтиленовый пакет подходящего размера с ватой (или другим гигроскопичным материалом) в количестве достаточном для адсорбции всего образца в случае его утечки; полиэтиленовый пакет следует герметично заклеить или запаять;
Отбор проб от людей Упаковка и транспортирование образцов 5. 1. 1 Образцы от одного пациента могут быть упакованы в один полиэтиленовый пакет. Не допускается упаковывать образцы материалов от разных людей в один и тот же пакет. 5. 1. 2 В полиэтиленовый пакет вкладывают бланк направления с указанием: наименование направляющего учреждения, ФИО больного, возраст, место жительства, предварительный диагноз, эпидемиологический анамнез, вид материала, дата и время взятия материала. 5. 2 Герметично закрытые полиэтиленовые пакеты помещают в термоизолирующий плотнозакрывающийся контейнер (термос), приспособленный для транспортирования биологических материалов.
Отбор проб от людей Упаковка и транспортирование образцов 5. 2. 1 В термоконтейнеры и термосы помещают охлаждающие элементы или пакеты со льдом. К наружной стенке термоконтейнера или термоса прикрепляют этикетку с указанием вида материала, условий транспортирования, названия пункта назначения. Сроки и условия транспортирования упакованных проб клинического материала указаны в приложении 2. 5. 3 Транспортирование проб клинического материала в референс-лабораторию, вирусологические лаборатории и лаборатории учреждений противочумной системы Роспотребнадзора осуществляется нарочным(и), информированным о правилах доставки материала в соответствии с п. 3. 4. СП 1. 2. 036 -95.
Грипп и ОРВИ
Приказ Роспотребнадзора от 31. 03. 2005 N 373 "О совершенствовании системы эпидемиологического надзора и контроля за гриппом и острыми респираторными вирусными инфекциями"
ПОРЯДОК ПРЕДСТАВЛЕНИЯ ИНФОРМАЦИИ ПО ФОРМЕ "СРОЧНОЕ ДОНЕСЕНИЕ О ЗАБОЛЕВАЕМОСТИ ГРИППОМ И ОСТРЫМИ РЕСПИРАТОРНЫМИ ВИРУСНЫМИ ИНФЕКЦИЯМИ (ОРВИ)" 1. Учреждения системы здравоохранения городов-центров республик, краев, областей, г. г. Москвы и Санкт-Петербурга: - ежедневно проводят подсчет случаев заболеваний гриппом и ОРВИ на основании статистических талонов для регистрации заключительных (уточненных) диагнозов; - ежедневно проводят подсчет случаев смерти от гриппа, ОРВИ на основании корешков врачебного свидетельства о смерти и корешков врачебного свидетельства о перинатальной смерти; - ежедневно проводят подсчет числа госпитализируемых больных гриппом, ОРВИ; - направляют информацию о заболеваемости гриппом и ОРВИ (по форме "Срочное донесение о заболеваемости гриппом и ОРВИ") в ФГУЗ "Центр гигиены и эпидемиологии" в межэпидемический период по телефону до 10 часов в понедельник за прошедшую неделю, а в эпидемический период - до 10 часов за прошедший день, а в городах Москве и Санкт-Петербурге - до 10 часов за прошедший день ежедневно на протяжении всего года.
ПОРЯДОК ПРЕДСТАВЛЕНИЯ ИНФОРМАЦИИ ПО ФОРМЕ "СРОЧНОЕ ДОНЕСЕНИЕ О ЗАБОЛЕВАЕМОСТИ ГРИППОМ И ОСТРЫМИ РЕСПИРАТОРНЫМИ ВИРУСНЫМИ ИНФЕКЦИЯМИ (ОРВИ)" 3. Опорные базы направляют в Федеральный центр и Центр экологии (по принадлежности) "Срочное донесение о заболеваемости гриппом и ОРВИ" в эпидемический период - ежедневно, г. г. Москва и Санкт-Петербург - ежедневно на протяжении всего года по электронной почте, факсу или телефону до 12 часов за прошедший день. 4. Опорные базы представляют в Федеральный центр и Центр экологии (по принадлежности) "Срочное донесение о заболеваемости гриппом и ОРВИ" в межэпидемический период по электронной почте, факсу или телефону до 12 часов в понедельник за прошедшую неделю. 5. Для обеспечения четкой оперативной информации руководители опорных баз определяют телефон и назначают ответственного для приема и передачи "Срочных донесений о заболеваемости гриппом и ОРВИ" в Федеральный центр и Центр экологии (по принадлежности).
ПОРЯДОК ПРЕДСТАВЛЕНИЯ ДОНЕСЕНИЙ О РЕЗУЛЬТАТАХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ В ОПОРНЫХ БАЗАХ ФЕДЕРАЛЬНОГО ЦЕНТРА ПО ГРИППУ И ОРВИ И ЦЕНТРА ЭКОЛОГИИ И ЭПИДЕМИОЛОГИИ ГРИППА 1. Донесения должны содержать данные: - вирусологических исследований (экстренные сообщения и еженедельные данные); - быстрой иммунофлуоресцентной (иммуноферментной, ПЦР) диагностики острых респираторных заболеваний (еженедельно); - серологической диагностики острых респираторных инфекций (ежемесячно); - изучения напряженности коллективного иммунитета населения по результатам исследования донорских сывороток (2 раза в год). Донесения представляются опорными базами Федерального центра по гриппу и острым респираторным вирусным инфекциям - в Федеральный центр, опорными базами Центра экологии и эпидемиологии гриппа - в Центр экологии. Экстренные донесения должны содержать сведения о каждом случае выделения вируса гриппа. Дифференциальная лабораторная диагностика проводится по всему спектру возбудителей гриппа и острых респираторных вирусных инфекций (ОРВИ).
ПОРЯДОК ПРЕДСТАВЛЕНИЯ ДОНЕСЕНИЙ О РЕЗУЛЬТАТАХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ В ОПОРНЫХ БАЗАХ ФЕДЕРАЛЬНОГО ЦЕНТРА ПО ГРИППУ И ОРВИ И ЦЕНТРА ЭКОЛОГИИ И ЭПИДЕМИОЛОГИИ ГРИППА Иммунологические исследования донорских сывороток производятся с эпидемически актуальными вирусами и потенциально возможными возбудителями предстоящей пандемии. Диагностическому лабораторному обследованию (выделение вируса и быстрая диагностика) подлежат больные гриппом или ОРВИ дети и взрослые, причем еженедельно должно быть обследовано не менее 10 - 15, а в период эпидемического подъема заболеваемости - не менее 20 - 50 заболевших детей и взрослых. Результаты серологической диагностики докладываются 1 раз в месяц. В межэпидемический период ежемесячно исследуется не менее 25 пар сывороток, в эпидемический период - не менее 100 пар сывороток от больных гриппом и ОРВИ.
ПОРЯДОК ПРЕДСТАВЛЕНИЯ ДОНЕСЕНИЙ О РЕЗУЛЬТАТАХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ В ОПОРНЫХ БАЗАХ ФЕДЕРАЛЬНОГО ЦЕНТРА ПО ГРИППУ И ОРВИ И ЦЕНТРА ЭКОЛОГИИ И ЭПИДЕМИОЛОГИИ ГРИППА Иммунологические исследования коллективного иммунитета (не менее 100 донорских сывороток в месяц) проводятся дважды в год - в пред - и постэпидемический периоды (октябрь и апрель месяцы). В случае выявления антител к потенциальным возбудителям пандемий в титрах 1: 64 и выше сыворотки от этих доноров незамедлительно направляются в Федеральный центр и Центр экологии (по принадлежности) для дальнейших исследований. Лабораторные исследования должны проводиться в установленном порядке.
ПОРЯДОК ПРЕДСТАВЛЕНИЯ ДОНЕСЕНИЙ О РЕЗУЛЬТАТАХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ В ОПОРНЫХ БАЗАХ ФЕДЕРАЛЬНОГО ЦЕНТРА ПО ГРИППУ И ОРВИ И ЦЕНТРА ЭКОЛОГИИ И ЭПИДЕМИОЛОГИИ ГРИППА 2. По каждому случаю выделения вируса гриппа или других респираторных вирусов опорные базы направляют в Федеральный центр и Центр экологии (по принадлежности) "Экстренное сообщение о выделении вируса" с применением средств оперативной связи (e-mail, факс). Кроме того, еженедельно в Федеральный центр и Центр экологии (по принадлежности) направляется сводная информация о выделении вирусов гриппа.
ПОРЯДОК ПРЕДСТАВЛЕНИЯ ДОНЕСЕНИЙ О РЕЗУЛЬТАТАХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ В ОПОРНЫХ БАЗАХ ФЕДЕРАЛЬНОГО ЦЕНТРА ПО ГРИППУ И ОРВИ И ЦЕНТРА ЭКОЛОГИИ И ЭПИДЕМИОЛОГИИ ГРИППА 3. Все выделенные вирусы, в т. ч. ранее неизвестные, не типируемые штаммы в количестве 8 - 10 мл вирусосодержащей цельной жидкости направляются в Федеральный центр и Центр экологии (по принадлежности). Кроме того, в Федеральный центр и Центр экологии высылается оперативное сообщение об отправлении вируса, а по почте - клинико-эпидемиологические данные на случаи гриппа со смертельным исходом (подтвержденные лабораторно) с указанием особенностей клинической картины: наличии явлений инфекционно-токсического характера - гипертермия, судороги, геморрагический синдром, пневмония, энцефалопатия и др. ; при выделении вируса от умерших от гриппа во время эпидемической вспышки в коллективе - дать ее описание (длительность, интенсивность, процент охвата, сроки развития). По случаям выделения вирусов из секционных материалов указывать место госпитализации, N истории болезни, эпикриза и протокол вскрытия.
ПОРЯДОК ПРЕДСТАВЛЕНИЯ ДОНЕСЕНИЙ О РЕЗУЛЬТАТАХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ В ОПОРНЫХ БАЗАХ ФЕДЕРАЛЬНОГО ЦЕНТРА ПО ГРИППУ И ОРВИ И ЦЕНТРА ЭКОЛОГИИ И ЭПИДЕМИОЛОГИИ ГРИППА 3. Все выделенные вирусы, в т. ч. ранее неизвестные, не типируемые штаммы в количестве 8 - 10 мл вирусосодержащей цельной жидкости направляются в Федеральный центр и Центр экологии (по принадлежности). Кроме того, в Федеральный центр и Центр экологии высылается оперативное сообщение об отправлении вируса, а по почте - клинико-эпидемиологические данные на случаи гриппа со смертельным исходом (подтвержденные лабораторно) с указанием особенностей клинической картины: наличии явлений инфекционно-токсического характера - гипертермия, судороги, геморрагический синдром, пневмония, энцефалопатия и др. ; при выделении вируса от умерших от гриппа во время эпидемической вспышки в коллективе - дать ее описание (длительность, интенсивность, процент охвата, сроки развития). По случаям выделения вирусов из секционных материалов указывать место госпитализации, N истории болезни, эпикриза и протокол вскрытия.
ПРОГНОЗИРОВАНИЕ ЧИСЛЕННОСТИ МЕЛКИХ МЛЕКОПИТАЮЩИХ И СОЛНЕЧНАЯ АКТИВНОСТЬ
ПОРЯДОК ПРЕДСТАВЛЕНИЯ ДОНЕСЕНИЙ О РЕЗУЛЬТАТАХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ В ОПОРНЫХ БАЗАХ ФЕДЕРАЛЬНОГО ЦЕНТРА ПО ГРИППУ И ОРВИ И ЦЕНТРА ЭКОЛОГИИ И ЭПИДЕМИОЛОГИИ ГРИППА Зоологов давно интересовали массовые вспышки численности мышевидных грызунов. Необходимым условием для составления прогноза численности мелких млекопитающих являются их учеты. Долгосрочные прогнозы связаны с попытками предвидеть изменения численности на много лет вперед. Речь идет, следовательно, о заблаговременном биологическом прогнозировании следующего, очередного подъема численности. Такие прогнозы представляют не только научный интерес, но и могут быть использованы в сельском хозяйстве и медицине. Циклическим колебаниям численности животных до сих пор нет удовлетворительного объяснения.
ПОРЯДОК ПРЕДСТАВЛЕНИЯ ДОНЕСЕНИЙ О РЕЗУЛЬТАТАХ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ В ОПОРНЫХ БАЗАХ ФЕДЕРАЛЬНОГО ЦЕНТРА ПО ГРИППУ И ОРВИ И ЦЕНТРА ЭКОЛОГИИ И ЭПИДЕМИОЛОГИИ ГРИППА Космофизические и климатические факторы как основа циклических колебаний редко находят сторонников, однако А. А. Максимов отстаивает точку зрения о наличии в природе закономерных циклических процессов, связанных, в том числе и с солнечной активностью. Ю. Ф. Золотов связывает развитие «больших волн» массовых размножений мелких грызунов с годами минимальной активности Солнца в 11 -летних циклах. По данным этого автора 5 -6 летние циклы солнцедеятельности и гелиообусловленные 5– 6 летние атмосферные ритмы в свою очередь обуславливают, «малые волны» в колебаниях численности мышевидных грызунов, и в частности на юге бывшего СССР – 5– 6 -летние ритмы колебаний численности мелких млекопитающих. Наши исследования подтвердили данную гипотезу.
ОТЛОВ, УЧЕТ И ПРОГНОЗ ЧИСЛЕННОСТИ МЕЛКИХ МЛЕКОПИТАЮЩИХ И ПТИЦ В ПРИРОДНЫХ ОЧАГАХ ИНФЕКЦИЙ МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ МУ 3. 1. 1029 -01
Во всех природно-климатических зонах Российской Федерации со своеобразными типами ландшафтов и их азональными компонентами птицы и мелкие млекопитающие, в первую очередь грызуны (местами и зайцеобразные), занимают ведущее положение в циркуляции возбудителей многих зоонозов. Особо важную роль в существовании природных очагов таких заболеваний играют, как правило, фоновые виды (обычно выступающие основными носителями возбудителя), которые с наибольшим постоянством принимают участие в развитии эпизоотий и поддержании очаговости. Грызуны служат и главными прокормителями разнообразных кровососущих членистоногих - переносчиков (а порой и длительных хранителей) возбудителя.
Так, в отдельных природных очагах чумы северных регионов Прикаспия и на Кавказе в качестве основных носителей выступают малый суслик, горный суслик, полуденная и гребенщиковая песчанки, обыкновенная полевка, а в условиях Сибири и Дальнего Востока - длиннохвостый и даурский суслики, монгольская пищуха. В очагах туляремии в соответствии с их ландшафтными типами первостепенное значение имеют водяная и другие виды полевок, лесная и домовая мыши, степная пеструшка, зайцы, хомяки, лемминги и остальные мелкие млекопитающие (в т. ч. насекомоядные), относящиеся к 1 группе по восприимчивости и чувствительности к возбудителю этого заболевания. В очагах клещевого энцефалита важную роль как прокормители клещей играют зайцы (беляк и русак), белка, бурундук, различные виды мелких грызунов, а также птицы (тетеревиные, дроздовые, некоторые мелкие лесные виды и др. ). Роль птиц в этих природных очагах становится особенно заметной в годы депрессии численности грызунов. На энзоотичных по разным инфекциям территориях отдельные виды носителей могут иметь важное эпидемиологическое значение как объекты промысла или других форм контакта с человеком, независимо от степени их участия в эпизоотическом процессе.
Оценка роли птиц в существовании природной очаговости болезней в последние десятилетия значительно возросла в связи с направленным выявлением нозоареалов обширной группы арбовирусных инфекций и необходимостью организации постоянного санитарно-эпидемиологического надзора за активностью таких очагов. Особую значимость в данном случае приобретают перелетные представители орнитофауны, способные к трансконтинентальным заносам возбудителей. К тому же арбовирусы, как правило, образуют сочетанные очаги с возбудителями многих других трансмиссивных заболеваний (бактериями, риккетсиями, простейшими и т. д. ).
Все это вызывает необходимость проведения комплексных исследований полевого материала на наиболее значимые для конкретных территорий нозологические формы природно-очаговых болезней. В Прилож. 1 содержится информация об участии некоторых видов грызунов и зайцеобразных в носительстве возбудителей ряда зоонозных инфекций. Хотя эти сведения далеко не исчерпывающие, они в основном отражают картину возможных сочетаний разных природных очагов опасных заболеваний человека в одной и той же местности, в которой обитает комплекс соответствующих видов носителей.
Общая организация зоологической работы в природных очагах болезней (чума, туляремия, клещевой энцефалит и т. д. ) подчинена современным требованиям оптимизации эпидемиологического надзора и органически связана с основными целями эпизоотологического мониторинга за такими очагами. Эти цели предполагают: - осуществление контроля за состоянием природных очагов на основе дифференциации их территорий по приоритетности и кратности обследования отдельных участков исходя из их эпизоотической активности и эпидемиологической значимости; - использование для полевых и лабораторных исследований наиболее экономичных и эффективных тактических и методических приемов, которые дают необходимый объем эпизоотологической информации с целью своевременного выявления разлитых эпизоотий, имеющих наибольшее эпидемиологическое значение; - определение интенсивности выявленных эпизоотий, границ их распространения, тенденции дальнейшего развития и степени эпидемической опасности; - сбор данных, характеризующих особенности механизма циркуляции возбудителя в периоды его активной фазы и сохранения в межэпизоотические периоды;
Общая организация зоологической работы в природных очагах болезней (чума, туляремия, клещевой энцефалит и т. д. ) подчинена современным требованиям оптимизации эпидемиологического надзора и органически связана с основными целями эпизоотологического мониторинга за такими очагами. Эти цели предполагают: - фиксирование изменений, происходящих в очагах при антропогенном воздействии и трансформации природных комплексов; - выявление новых природных очагов и определение функциональной роли отдельных видов носителей и переносчиков в таких очагах; - прогнозирование эпизоотических ситуаций и угрозы эпидемических осложнений; - обоснование необходимых мер профилактики в очагах; - проведение информационно-разъяснительной работы среди населения.
В частные задачи полевого раздела работы входят: - общая оценка состояния биотических и абиотических факторов в природных очагах болезней с учетом меры антропогенного воздействия на их биогеоценозы; - получение первичного полевого материала для лабораторных исследований путем добычи носителей, сбора их трупов, костных останков, а также остатков стола пернатых и наземных хищников, продуктов их метаболизма (погадки, экскременты); в отдельных случаях - взятие субстрата из нор грызунов и сбор экскрементов основных видов носителей; - проведение в оптимальные фенологические сроки учетов численности носителей (в первую очередь, фоновых видов), оценка ее текущего состояния и прогноз ожидаемых изменений;
В частные задачи полевого раздела работы входят: - определение биотопической приуроченности и пространственной (по возможности и популяционной) структуры поселений носителей, хода размножения и эколого-физиологического состояния особей, возрастного и полового состава популяций, подвижности животных и других особенностей экологии, которые определяют развитие эпизоотии и условия заражения человека; - выявление мест сохранения поселений носителей ("станций переживания") в периоды депрессий их численности; - уточнение видового состава, пространственного распределения и численности животных на потенциально очаговых территориях, выявление на них мест возможного возникновения эпизоотий; - проведение плановых наблюдений на стационарных участках.
Помимо полевого раздела работы зоологи принимают участие в подготовке собранного материала к лабораторным исследованиям и его камеральной обработке. При этом предусматривается: - разбор погадок хищных птиц, экскрементов плотоядных млекопитающих и костных останков носителей для серологических исследований и генодиагностики; определение животных по возможности с точностью до вида по содержащимся костным фрагментам; - при вскрытиях животных контроль за правильностью определения возрастного и полового состава добытых особей, их репродуктивной активности по состоянию генеративных органов, уточнение при необходимости видовой принадлежности; - оформление коллекционных материалов, экспонатов и т. п. ; - анализ результатов полевых наблюдений и лабораторных исследований, а также уточнение существующих схем ландшафтноэкологического и эпизоотологического районирования очаговых территорий; - составление обзора и прогноза численности носителей, участие в составлении эпизоотологического прогноза по состоянию природных очагов; - определение в случае необходимости характера и объемов профилактических мероприятий в природных очагах.
Лабораторные исследования материала: Бактериологические исследования на туляремию Бактериологические исследования на листериоз Бактериологические исследования на иерсиниоз (полевой матермал, клинический материал) Серологич. исследования на туляремию РНАТ Серологич. исследования на листериоз Серологич. исследования на иерсиниоз ГЛПС (грызуны) ИФА
Лабораторные исследования материала: Бактериологические исследования на туляремию Бактериологические исследования на листериоз Бактериологические исследования на иерсиниоз (полевой матермал, клинический материал) Серологич. исследования на туляремию РНАТ Серологич. исследования на листериоз Серологич. исследования на иерсиниоз ГЛПС (грызуны) ИФА ПЦР-диагностика лептоспироз
Энтомологический мониторинг
Методические указания МУ 3. 1. 3012 – 12 СБОР, УЧЕТ И ПОДГОТОВКА К ЛАБОРАТОРНОМУ ИССЛЕДОВАНИЮ КРОВОСОСУЩИХ ЧЛЕНИСТОНОГИХ В ПРИРОДНЫХ ОЧАГАХ ОПАСНЫХ ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ
Значительная часть территории Российской Федерации энзоотична по различным природно-очаговым болезням. Переносчиками возбудителей многих болезней являются кровососущие членистоногие. Они не только обеспечивают циркуляцию патогенов в природе, но в большинстве случаев служат их резервуарами и долговременными хранителями. Изучение эколого-эпизоотологических особенностей переносчиков, имеющих медицинское значение при различных инфекционных болезнях, является важным разделом работы в комплексе противоэпидемических мероприятий.
Среди кровососущих членистоногих как переносчиков возбудителей опасных инфекционных болезней основное значение имеют блохи, иксодовые клещи, комары, в отдельных случаях – аргасовые, гамазовые, краснотелковые клещи, слепни, мошки, мокрецы, вши.
Энтомологическая работа является одним из разделов эпизоотологического обследования, входящего в общую систему эпидемиологического надзора за опасными инфекционными болезнями. Она обеспечивает получение необходимой информации о кровососущих переносчиках этих болезней в целях изучения их природных очагов, прогнозирования эпизоотической и эпидемической ситуаций, планирования и проведения адресных профилактических мероприятий.
Энтомологическая работа в природных очагах включает: – сбор кровососущих членистоногих для лабораторного исследования с целью выявления их участия в циркуляции возбудителей опасных инфекционных болезней; – установление видового состава переносчиков и особенностей их распределения по объектам сбора; – наблюдение за сезонным, годовым, многолетним ходом численности паразитов и характером их пространственного размещения; – изучение экологии переносчиков возбудителей болезней и факторов, влияющих на их численность на конкретных участках энзоотичной территории;
Энтомологическая работа в природных очагах включает: – определение физиологического и генеративного состояния массовых видов отдельных групп эктопаразитов в различные фенологические периоды их жизнедеятельности, что необходимо для эпизоотологического прогноза, планирования мероприятий по неспецифической профилактике; – подготовку кровососущих членистоногих для лабораторного исследования; – составление обзора и прогноза численности переносчиков; – создание фундаментальных, справочных и учебных коллекций эктопаразитов, встречающихся в природных и антропоургических очагах.
Лабораторные исследования материала ПЦР диагностика борелиоз, клещевой энцефалит, анаплазмоз, эрлихиоз ПЦР на ЛЗН Дирофиляриоз (полевой материал - комары)
Сибирская язва
МУК 4. 2. 2413 -08 МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ 4. 2. МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ. БИОЛОГИЧЕСКИЕ И МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ФАКТОРЫ Лабораторная диагностика и обнаружение возбудителя сибирской язвы
Исследование на сибирскую язву включает микроскопию мазков из исходного материала, высевы на питательные среды, постановку основных и дополнительных тестов идентификации, использование МФА для обнаружения антигенов и антител к ним, постановку ПЦР, биопробы и реакции преципитации. У человека и свиней, в случае невозможности установить диагноз вышеперечисленными методами, обязательна постановка клинической кожно-аллергической пробы с сибиреязвенным аллергеном.
Материал для исследования: а) от больных или подозрительных на заболевание людей, в зависимости от формы заболевания - содержимое везикул, отделяемое карбункула или язвы, струпья, мокрота, кровь, спинномозговая жидкость, моча, испражнения, экссудаты; б) трупный материал - кровь, экссудаты, кусочки органов (селезенки, печени, лимфоузлов и др. ); в) материал от животных; г) продовольственное сырье и продукты животного происхождения; д) объекты окружающей среды - почва, трава, фураж, подстилка, вода и т. д. Забор всех видов материала осуществляется в стерильную стеклянную или пластиковую посуду, соответствующую объему проб. Иммунофлуоресцентным, серологическим и бактериологическим методами исследуется соответствующий материал из общей пробы.
Отбор проб почвы При отборе проб почвы следует руководствоваться "Методическими рекомендациями по отбору проб почвы для бактериологического исследования на наличие возбудителей сибирской язвы и актиномицетовантагонистов" (М. , 1984). Пробы почвы с мест вероятного обсеменения спорами возбудителя (мест вынужденного убоя скота, стоянок и водопоя животных) берут на глубине до 15 см, на территории скотомогильников - на глубине до 2 м с помощью почвенных буров. При этом при заборе проб с большой территории обследуемую площадь разбивают на квадратные участки со стороной не более 4 м. В каждом квадрате намечают 5 точек по диагонали или 4 точки по краям и одну посередине, откуда производят отбор проб почвенным буром. Перед взятием почвы на территории скотомогильника верхний ее слой снимают на 2 -3 см и пробы берут на глубину до 1, 5 -2, 0 м через каждые 25 см не менее 200 г в пробе.
Отбор проб почвы Особое внимание обращают на костные и другие животные остатки, которые также отбираются для исследования. Пробы упаковываются в том же порядке. Каждую пробу весом около 100 -200 г помещают в мешочек из плотной ткани с завязками или в лабораторную посуду (широкогорлый флакон, банку), закрытую такой же тканью. Нельзя помещать пробы почвы в полиэтиленовые мешочки или в плотно закрытую посуду, так как в этих условиях происходит бурное развитие актиномицетов, губительно действующих на возбудитель сибирской язвы. Вынутую из глубины и не использованную для проб почву с целью обеззараживания смешивают с сухой хлорной известью, содержащей 25% активного хлора, в соотношении 1 часть хлорной извести на 3 части почвы, слегка увлажняют и сбрасывают в шурф. Место отбора проб дезинфицируют раствором хлорной извести, содержащей 5% активного хлора, инструменты - огнем паяльной лампы.
Холера
ÌÓ 3. 1. 1. 2232 -07 МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ 3. 1. 1. ПРОФИЛАКТИКА ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ. КИШЕЧНЫЕ ИНФЕКЦИИ Профилактика холеры. Организационные мероприятия. Оценка противоэпидемической готовности медицинских учреждений к проведению мероприятий на случай возникновения очага холеры
Мероприятия по обеспечению эпидемиологического надзора за холерой Мероприятия включают: сбор и анализ заболеваемости холерой за рубежом и на территории России; ретроспективный эпидемиологический анализ заболеваемости холерой и выявления вибриононосителей, выделения холерных вибрионов О 1/О 139 из объектов окружающей среды на обслуживаемой территории; определение контингентов, подлежащих обязательному бактериологическому обследованию на холеру в соответствии с действующими санитарно-эпидемиологическими правилами "Профилактика холеры. Общие требования к эпидемиологическому надзору за холерой", осуществление контроля за обследованием людей на холеру;
Мероприятия по обеспечению эпидемиологического надзора за холерой Мероприятия включают: определение стационарных точек отбора проб воды на холеру из поверхностных водоемов и других объектов окружающей среды и осуществление контроля за исследованием на холеру; проведение мероприятий при выделении холерных вибрионов О 1/О 139 серогрупп из объектов окружающей среды.
Мероприятия по обеспечению эпидемиологического надзора за холерой Необходимо: Проводить бактериологические исследования на холеру проб из поверхностных водоемов и других объектов окружающей среды согласно перечню стационарных точек отбора проб на административной территории Проводить паспортизацию точек отбора проб воды из поверхностных водоемов Проводить оценку качества воды на соответствие санитарным правилам и условиям безопасного для здоровья населения использования водных объектов, систем централизованного и нецентрализованного питьевого водоснабжения
Скачать презентацию Мониторинг объектов окружающей среды напряженности иммунитета и циркуляции
Мониторинги.ppt